Arbeidsbeskrivelse

Arbeidets gang

Før behandling starter

• Kontakt rekvirent for opplysninger om når behandlingen er planlagt å starte
• Legg inn kode DARASTART (Pasienten har startet med Daratumumab/Isatuximab-behandling ${textfield|Dato}) i P000 – Kommentarer. Legg inn opplysningen du har (dato, cirka dato eller ukjent dato). Velg gyldighet Inntil videre og hak av for visning i Oversiktsbilde
• De rekvirerer prøver av pasienten, helst før pasienten starter med behandlingen, men det er også mulig å ta den etter behandlingsstart. Da vil mest sannsynlig DAT være positiv og alle typinger bortsett fra Rh fenotyping og K være falsk positiv
• Pakken «Blodbank analysepakke pre anti CD38» bestilles i HP. Den inneholder analysene som er nevnt i tabellen under:

 

Type prøve	Analyser	Kommentar
6 mL EDTA	ABO og RhD type Antistoffscreening Fenotypepakke Fya/Fyb-typing Jka/Jkb-typing M-typing Cw-typing Ss-typing DAT	Alle analyser utføres på blodbanken Levanger
3 mL EDTA	Genetisk blodtype (ID Core XT)	Prøven sendes SOH

 

LEVANGER

Prøven til Genetisk blodtype leveres kontor/prøvefordeling for sending til SOH. Før opp prøven på lista ALM-BB-L; Prøver som er videresendt til andre laboratorier som ligger i antistoffskuffa.

 

NAMSOS

Namsos utfører ingen analyser i denne pakken selv. Glassene leveres kontor/prøvefordeling for sending ihht. tabellen over. Levanger legger inn resultater i Prosang når dette foreligger.

Resultatbehandling

• ABO/RhD-typing og antistoffscreening besvares på samme måte som andre pretransfusjonsprøver. Hvis prøven er tatt FØR pasienten starter med anti-CD38 behandling vil antistoffscreening være negativ, så sant pasienten ikke har dannet et blodtypeantistoff
• De serologiske antigentypingene og DAT blir automatisk verifisert i Beaker
• De serologiske antigentypingene må besvares manuelt i Prosang. Bruk tabell i P551 om prøven ikke er ferdig besvart. Om prøven er ferdigrapportert, gå inn i P000 – Status forlik. Trykk Endre (helt til høyre under spesielle krav) og legg inn resultat i kolonnen Typing. En annen bioingeniør kontrollerer innleggingen

Når resultat av Genetisk blodtype ligger i Beaker:

• Skriv ut svarrapporten i Beaker:
• Gå i Resultatrapport (etter prøve) og skriv inn eller skann prøvenummer for Genetisk blodtype
• Hak av for Rekvirenter og velg Legg til i liste
• Trykk Bekreft
• Rapporten kommer ut på skriver HE199131 i Ekspedisjonen
• Gå i P000 – Kommentarer og legg inn kode DARAFENO (Genetisk typing er utført ved St. Olavs Hospital. Pasienten er negativ på følgende antigen: ${textfield|Rubrik}. Det skal ikke settes opp utvidet forlik ved positiv screening. Se EQS prosedyre 28046. Gi mest mulig fenotypelikt blod. Blod må gis på biologisk forlik)
• Legg inn negative antigener
• Antigen som ikke legges inn i ProSang er: V, hrS, VS, hrB, k, Kpb, Jsa, Jsb, N, U, Mia, Dia, Dib, Doa, Dob, Hy, Joa, Coa, Cob, Yta, Ytb og Lub
• Velg gyldighet inntil videre og hak av for visning i Oversiktsbilde
• Legg også inn typingene i tabell i P000 – Status forlik
• Kontroll-les og signer på skjema «Prøver som er videresendt til andre laboratorier»

Resultatbehandling når pasienten har startet med DARA/Isatuximab

• Antistoffscreening vil være positiv mot alle 3 screeningceller. Prøven får status avventer vurdering
• Hvis antistoffscreening er > 2+ eller det er visuell forskjell i styrke på screeningcellene, kontakt vakthavende lege ved AIT, SOH på tlf. 46 80 62 25
• Følg fremgangsmåte for positive antistoffscreeninger som ikke skal identifiseres. Se prosedyre ALM-BB-Vakt; Antistoffscreening
• Legg inn kommentar .BB17 (Antistoffscreening er positiv pga. Daratumumab/Isatuximab-behandling) i Beaker på analysen antistoffscreening

Blodbestilling

• Ved blodbestilling skal det kun settes opp utvidet forlik hvis pasienten har fått påvist blodtypeantistoff
• Velg erytrocyttkonsentrat som er negativ på de antigenene som pasienten er negativ på i prioritert rekkefølge: Rhfeno, K, Jk, Fy, MNSs så langt det går. Hvis pasienten er DAT positiv og det ikke er utført genetisk blodtype, velges det erytrocyttkonsentrat kun ut fra Rhfenotyping og K
• Ved reservering av erytrocyttkonsentrat i P610 vil det bli skrevet ut «Arbeidsskjema for forlikelighetstester» fordi antistoffscreening er positiv
• Ved oppsett av utvidet forlik skal det tas en vurdering på grunnlag av styrkegrad på forliket og fenotypelikhet mellom pasient og blodgiver:

• For alle resultat ≤ 2+: Prioriter mest mulig fenotypelikt. Vurder om det kan settes opp ekstra typinger på blodgiver som gir det beste forliket
• For alle resultat > 2+: Sett opp flere utvidet forlik for å se om det er noen som blir bedre
• Konferer med vakthavende lege før blodet gis ut
• Gi ut erytrocyttkonsentrat i P622. Bruk kode 7c, ikke forlikt, og kontrollregistrer i P314. Dersom det er utført utvidet forlik, brukes aktuell kode for påvist blodtypeantistoff
• Send med skjema for biologisk forlik ALM-BB; Biologisk forlik

Når pasienten har sluttet med DARA/Isatuximab

• Antistoffscreeningen kan fortsatt være positiv i inntil 6 måneder, men den kan også bli negativ. Gå i P000 – Kommentarer og legg inn kommentar DARASLUTT (Pasienten har sluttet med Daratumumab/Isatuximab-behandling). Legg inn dato for siste behandling som fritekst om du har dette
• Hvis antistoffscreening er negativ, kan det utføres dataforlik.
  Gjør om til Dataforlik tillatt i P000 – Status forlik. Om prøven er ferdig vurdert og ferdigrapportert, må det utføres en omkjøring på den gyldige pretransfusjonsprøven. Inntil dette er utført, må blodet gis ut som «Ikke forlikt» i P622 (kode 7c). Det skal ikke sendes med skjema for biologisk forlik

Referanser

1. Marlies Oostendorp,1 Jeroen J. Lammerts van Bueren,2 Parul Doshi,3 Imran Khan,3Tahamtan Ahmadi,3 Paul W.H.I. Parren,2,4 Wouter W. van Solinge,1 and Karen M.K. De Vooght1 When blood transfusion medicine becomes complicated due to interference by monoclonal antibody therapy.
2. Niels W.C.J. van de Donk₁, Philippe Moreau₂, Torben Plesner₃, Antonio Palumbo₄, Francesca Gay₄, Jacob P. Laubach₅, Fabio Malavasi₆, Herve Avet-Loiseau₇, Maria-Victoria Mateos₈, Pieter Sonneveld₉, Henk M.  Lokhorst₁, Paul G. Richardson₅ Clinical efficacy and management of monoclonal antibodies targeting CD38 and SLAMF7 in multiple myeloma.
3. Judth I.Hannon Transfusion management of patients receiving daratumumab therapy for advanced plasma cell myeloma, Transfusion Volume 55, 2015.
4. Chapuy CI, Nicholson RT, Aguad MD, et al. Resolving the daratumumab interference with blood compatibility testing. Transfusion 2015;55:1545-54.
5. Trick or Treatment? Anti-CD38 Panreactivity and How to Handle It, AABB 2015.
6. AABB bulletin 16-02: Mitigating the Anti-CD38 Interference with Serologic Testing.
7. Paul W. H. I. Parren Anderson, Henk M. Lokhorst, Jan G. J. van de Winkel and Slootstra, Tuna Mutis, Wim K. Bleeker, Kenneth C. A. Oomen, Matthias Peipp, Thomas Valerius, Jerry W. Joost M. Bakker, Tom Vink, Daniëlle C. H. Jacobs, Lukas Michel de Weers, Yu-Tzu Tai, Michael S. van der Veer Hematological Tumors of Multiple Myeloma and Other CD38 Monoclonal Antibody, Induces Killing Daratumumab, a Novel Therapeutic Human.
   http://www.jimmunol.org/content/186/3/1840
   doi: 10.4049/jimmunol.1003032
   December 2010;
   J Immunol 2011; 186: